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COMPTE RENDU DE TP ÉCOLOGIE MICROBIENNE Professeur TOULZA Eve Groupe MARY Elodi

COMPTE RENDU DE TP ÉCOLOGIE MICROBIENNE Professeur TOULZA Eve Groupe MARY Elodie MASVIDAL Angélique REY-IVAN Eliott Université de Perpignan Via Domitia Année 2011/2012 SOMMAIRE I- INTRODUCTION.…..........................................................................................................3 II - MATÉRIELS & MÉTHODES.…........................................................................................4 III - RÉSULTATS.................................................................................................................7 IV - CONCLUSION & DISCUSSIONS.....................................................................................10 V - RÉFÉRENCES..............................................................................................................11 I)INTRODUCTION 1) Historique • L'étude des micro-organismes tels que les bactéries a débuté réellement à la fin du 17ème siècle et continue à se développer de nos jours : – en 1677, le savant néerlandais Antoine van Leeuwenhoek découvre les bactéries grâce aux améliorations qu'il a apporté au microscope optique. Il est considéré comme un des précurseurs de la microbiologie. – En 1884, Hans Christian Gram, bactériologiste danois, développa une technique de coloration, la coloration de Gram, permettant de différencier deux grands groupes de bactéries : les bactéries à Gram – et les bactéries à Gram +. Cette technique est grandement utilisé en microbiologie pour identifier les bactéries. – la découverte des antibiotiques a permis le développement d'une technique appelée antibiogramme, permettant d'étudier la sensibilité de certaines bactéries face à des antibiotiques. On doit les premières découvertes sur les antibiotiques à Alexander Fleming qui découvrit les propriétés antibactériennes d'une toxine produite par le champignon Penicillum : la penicilline. – vers 1970, plusieurs scientifiques et hommes de médecine créent la galerie API, une plaque de petits tubes permettant d'effectuer des tests biochimiques de façon rapide et facile. Cette galerie permet d'identifier des micro-organismes comme les bactéries grâce à une base de données administrée par la société Biomérieux. • D'autres tests permettant l'identification de souches bactériennes ont été élaboré au cours de ces années et qui nous ont permis lors de ce TP d'identifier notre bactérie inconnue. 2) Intérêt • L'identification de souches bactériennes a pour but de classer et d'étudier les différentes bactéries présentes dans la nature. La découverte de leurs propriétés biochimiques et/ou physico-chimiques peuvent apporter de grands changements dans le domaine de la Santé comme la médecine, la pharmacologie, etc... ou encore dans l'industrie agroalimentaire. 3) Objectif du TP • L'objectif principal du TP est d'identifier et caractériser une souche bactérienne inconnue, grâce à une batterie de tests standards en microbiologie. Cela permet entre autre de se familiariser avec ces différents tests, le matériel adéquat et la contrainte de travailler en milieu stérile. 4) Résumé des expériences • Au cours de ces deux jours de TP, nous avons effectué une série de tests pour identifier notre souche bactérienne inconnue. Nous avons tout d'abord réalisé un étalement selon la méthode des quadrants pour isoler une colonie bactérienne, pour pouvoir évaluer la densité des bactéries mais aussi pour pouvoir utiliser ces colonies pour d'autres expériences. Nous avons ensuite réalisé des tests aux antibiogrammes, une galerie API 20E, un test au KOH, un test à l'oxydase, un test de la catalase et une coloration de Gram. Le deuxième jour a servi à récolter les résultats des tests nécessitant une longue incubation. II) MATÉRIELS & MÉTHODES 1) Coloration de Gram • Matériels requis : – une lame de microscope – de l'eau distillée – une anse de platine – un bec bunsen – un portoir et un bac de coloration – colorants : violet de gentiane et fushine – du Lugol – de l'alcool ou un mélange alcool-acétone – un microscope • Méthode : On dépose tout d'abord une goutte de suspension bactérienne avec l'anse de platine sur une lame de microscope que l'on sèche grâce à la flamme du bec bunsen. Après avoir posé la lame sur le portoir, on réalise une première coloration avec le violet de gentiane que l'on laisse agir environ 1 minute puis on rince avec de l'eau distillée. Puis, on effectue un mordançage au Lugol que l'on laisse agir pendant 20 secondes environ. On peut répéter l'opération une seconde fois pour plus de sûreté. Ensuite, on décolore à l'alcool en inclinant la lame jusqu'à ce que le liquide soit clair, et on rince à l'eau distillée. Enfin, on réalise une deuxième coloration avec la fushine que l'on laisse agir pendant 1 minute environ. On lave ensuite avec de l'eau distillée puis on sèche la lame avec la flamme du bec bunsen. Une fois sèche, on peut observer notre lame sous un microscope optique, avec l'objectif 100 maximum. 2) Test au KOH • Matériels : – une lame de microscope – un compte-goutte – une solution de KOH à 3% • Méthode : Sur une lame de microscope, on pose quelques gouttes de KOH à 3% ainsi qu'une petite colonie de bactéries. Il est cependant important que cette colonie soit âgée de moins de 48h. Avec le compte- goutte, on homogénéise le mélange durant 15 à 30 secondes environ. Au terme de cela, on pourra observer ou non un filament visqueux provenant du mélange. 3) Test de la catalase • Matériels : – une lame de microscope – une anse de platine – de l'eau oxygénée à 3% • Méthode : On dépose tout d'abord sur la lame une goutte d'eau oxygénée puis on ajoute une colonie de bactéries. On peut aussi déposer en premier la colonie de bactéries puis ajouter l'eau oxygénée. On pourra observer ou pas une effervescence immédiatement. 4) Test aux Antibiogrammes • Matériels : – deux boites de Pétri avec milieu gélosé – un compte-goutte – une pince – des disques de papier buvard contenant différents antibiotiques (ici, 6 antibiotiques différents) – un bec bunsen – un étaloir • Méthode : Tout d'abord, on effectue deux étalement de surface de notre suspension bactérienne dans deux boites de Pétri contenant un milieu gélosé, tout en restant dans la zone stérile du bec bunsen. Puis grâce à une pince que l'on stérilisera avant et après chaque utilisation, on dépose 3 disques différents dans chaque boite, en prenant soin de les espacer équitablement. Puis, on entrepose nos boites à l'étuve à environ 35°C pendant maximum 24h. Au bout de ce temps là, on pourra observer ou non une zone d'inhibition circulaire plus ou moins grande autour des disques d'antibiotique. 5) Galerie API 20E • Matériels : – une galerie API 20E – de l'eau distillée – une boite d'incubation – une ampoule de NaCl 0,85% – une anse de platine – standard Mc Farland N°5 – de l'huile de paraffine – un compte-goutte – divers réactifs : hydroxyde de potassium (40%), alpha-naphtol (6%), acide sulfanilique (0,8%), NN-dimethyl-alpha-naphtylamine (0,05%), chlorure ferrique (10%), réactif de Kovac ou James, poudre de zinc • Méthode : • Préparation de la galerie API : Après avoir récupérer une boite d'incubation, on dépose environ 5mL d'eau distillé dans le fond de la boite en prenant soin de remplir toutes les alvéoles. Cela permettra de créer une atmosphère humide dans la boite. Puis, on inscrit les références du groupe sur la languette de la boite et on dépose dans cette dernière la galerie. • Préparation de l'inoculum : Après avoir ouvert une ampoule de NaCl 0,85%, on y introduit une seule colonie isolée de bactéries avec l'anse de platine et on réalise une suspension bactérienne de concentration 108 bactéries/mL en comparant notre suspension avec le standard Mc Farland N°5 et en ajoutant au besoin de la solution de NaCl 0,85%. Une fois la suspension bactérienne préparée, elle doit être utilisée dans les 15 minutes qui suivent. • Inoculation de la galerie API : Grâce à un compte goutte, on remplit la galerie API 20E comme suit. Pendant ces opérations, il est important de ne pas avoir de bulles d'air dans les tubes et cupules : – on remplit les tubes et cupules des tests |CIT|, |VP| et |GEL|. – on remplit uniquement les tubes de tous les autres tests. – On remplit les cupules d'huile de paraffine des tests ADH, LDC, ODC, URE et H2S pour créer une anaérobiose. Enfin, on ferme la boite d'incubation et on place notre boite à l'étuve à environ 36°C durant 24h. • Lecture de la galerie API 20E Après incubation, on peut lire les résultats de notre galerie. Cependant, la plupart des tubes doivent recevoir un réactif pour que l'on puisse obtenir le résultat du test. Les résultats seront consignés dans une fiche de résultats de la galerie API 20E et on pourra déterminer ces résultats grâce à un tableau API 20E fourni. L'ajout des réactifs dans les tubes doit être réalisé dans l'ordre qui suit : – pour le tube VP, ajouter une goutte d'hydroxyde de potassium (40%) et une goutte d'alpha- naphtol (6%) et attendre 10 min avant la lecture du résultat. – pour le tube GLU, il faut ajouter 2 gouttes d'acide sulfanilique (0,8%) et 2 gouttes de NN- dimethyl-alpha-naphtylamine (0,05%) et attendre 2 à 3 min avant lecture. Il faudra préalablement vérifier la présence ou non de bulles, signifiant la réduction du nitrate sous forme gazeuse (N2). Si la réaction est négative, il faut ajouter de la poudre de zinc et attendre 10 min avant la lecture du résultat. – pour le tube TDA, il faut ajouter une goutte de chlorrure ferrique (10%) et lire immédiatement le résultat. – pour le tube uploads/Industriel/compte-rendu-tp-ecologie-microbienne.pdf